La principal importancia del estudio de la parasitología radica en que muchas de las "enfermedades tropicales" que conocemos son de origen parasitario y se deben en gran medida a falta de higiene y condiciones ambientales propicias en los países subdesarrollados (aproximadamente 75 % de la población mundial).Por medio de la técnica de concentración podemos separar los parásitos de la materia fecal. Tales técnicas no solo aumentan el número de parásitos en el sedimento sino también los desenmascaran, haciéndolos más visibles mediante la eliminación de desechos orgánicos e inorgánicos. Tubos concentradores de 15ml parásitos fecales, para la fácil y eficient concentración de Huevos de Helmintos y larvas, Quistes de Protozoa y Ooquistes.

BENEFICIOS DE SALUD Y SEGURIDAD
Proceso totalmente cerrado/sellado
Dispositivo desechable
De un solo uso, elimina la contaminación cruzada
Sistemas precargados disponibles.

 Protocolo MiniParasep

BENEFICIOS DE RENDIMIENTO
Recuperación óptima de muestras
Claridad de muestra mejorada
Proceso rápido de cuatro pasos
Recursos humanos optimizados
Reduce el error humano

Es importante cononocer las ventajas de las metodologías para el exámen final de parásitos.

Favor ver estudio hecho:

Otras observaciones sobre el
concentración de formol-éter
técnica para parásitos fecales
A. V. H. ALLEN Y D. S. RIDLEY Desde el
Hospital de Enfermedades Tropicales, St Pancras
Camino, Londres
La versión simplificada de la técnica de formol-éter de Ritchie para la concentración de quistes fecales, óvulos y
larvae (Ridley y Hawgood, 1956), que no es menos
efectivo que el original, ha sido bastante ampliamente
adoptado como un procedimiento de diagnóstico de rutina útil.
Con más experiencia, sin embargo, tres objeciones
han llegado a ser evidentes, que se aplican también a algunos otros
métodos de concentración: (1) El grado de concentración de Taenia y Ascaris (especialmente Ascaris infértiles)
el óvulo es insatisfactorio en algunos casos; y la concentración de óvulos de Schistosoma es inferior a la óptima. (2)
Es difícil hacer que el depósito concentrado se adhiera.
a un portaobjetos de microscopio para fijación y tinción. (3) El
concentración de muestras fecales, fijadas a granel y
almacenada por un período de días o semanas, no es satisfactoria.
El objeto del presente trabajo es describir
otras modificaciones sencillas que superan la
las dos primeras de estas objeciones.  Para el estudio completo sobre resultados de las diferentes técnicas. 

 APAFIX
Fijativo Universal patentado por Apacor para larvas, costos de protozoa y Oocystos.

Características y Beneficios
Simplifica el procesamiento de muestras.
Fijador libre de formalina
Sin etiquetas de advertencia: no tóxico, no inflamable, ecológico
Apto para todas las fijaciones Parasitológicas
Conserva la morfología incluso con organismos delicados
Compatible con PCR y otros métodos moleculares
Se puede utilizar junto con los EIA.
Adecuado para su uso con una variedad de técnicas de tinción comunes
Disponible en vial de transporte y viales llenos de Parasep®

FIJADOR DE FORMALINA AL 10% EN AGUA
Este conservante es un buen fijador general y fijará tanto los óvulos como los quistes, aunque solo conserva la morfología interna de los quistes hasta por 6 meses, después de lo cual el citoplasma del organismo se vuelve granular con mala definición nuclear.
ACETATO DE SODIO ÁCIDO ACÉTICO FORMALINA (SAF)
El material fijo SAF es adecuado para examen directo, concentración (formalina/acetato de etilo) y tinción permanente.
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MERTIOLATO-YODO FORMALINA (FOMIN)
Los métodos de concentración de acetato de etilo-formol se pueden realizar en muestras conservadas en MIF.
ALCOHOL POLIVINÍLICO (PVA)
Este método preservará bien los óvulos, las larvas y los trofozoítos, pero los quistes pueden mostrar alguna distorsión. Sin embargo, algunos óvulos y quistes no se concentran bien cuando se conservan en PVA.